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實(shí)時(shí)定量PCR實(shí)驗(yàn)方案優(yōu)化

放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-07-06
由于各家公司生產(chǎn)的熱循環(huán)儀提供的各種實(shí)驗(yàn)方案不太一致,所以?xún)?yōu)化的策略也不盡相同,然而在各種方案中,前文所述的那些影響實(shí)時(shí)PCR 反應(yīng)的因素卻總是相通的。只要能較好地控制實(shí)驗(yàn)條件,優(yōu)化實(shí)驗(yàn)步驟,要想獲得滿(mǎn)意的實(shí)驗(yàn)結(jié)果并不一定都是困難的。下面本文將就影響到實(shí)驗(yàn)結(jié)果的一些基本參數(shù)和實(shí)驗(yàn)步驟談一談關(guān)于實(shí)時(shí)定量PCR的優(yōu)化。
1. 基本參數(shù)的優(yōu)化:
1.1   MgCl2的濃度 在PCR反應(yīng)中,MgCl2的濃度對(duì)影響酶的活性是至關(guān)重要的,不僅如此,合適的MgCl2的濃度還能在反應(yīng)中得到較低的Cp(crossing point)值,較高的熒光信號(hào)強(qiáng)度以及良好的曲線(xiàn)峰值。所以對(duì)其的深度選擇應(yīng)慎重。一般來(lái)說(shuō),對(duì)以DNA或cDNA為模板的PCR反應(yīng),應(yīng)選擇2-5mM濃度的MgCl2,對(duì)以mRNA為模板的RT-PCR而言,則應(yīng)選擇的濃度為4-8mM。
1.2   模板的濃度:如果研究者是進(jìn)行首次實(shí)驗(yàn),那么應(yīng)選擇一系列稀釋濃度的模板來(lái)進(jìn)行實(shí)驗(yàn),以選擇出最為合適的模板濃度,如果條件困難,也至少要選擇兩個(gè)稀釋度(高和中、低濃度)來(lái)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。一般而言,使Cp位于15-30個(gè)循環(huán)比較合適,若大于30則應(yīng)使用較高的模板濃度,如果Cp小于15則應(yīng)選擇較低的模板深度。對(duì)于Cp值的確定,經(jīng)驗(yàn)上是SYBR Green I探針的熒光信號(hào)比本底高2倍,雜交探針的熒光強(qiáng)度比本底高0.3倍。
  2. 使用SYBR Green I測(cè)定DNA時(shí)的條件優(yōu)化:
2.1 MgCl2的濃度:大多數(shù)引物-模板對(duì)其的要求是2-4 mM。
2.2模板的濃度:初次實(shí)驗(yàn)要求做一系列的稀釋濃度,如條件限制,至少完成兩個(gè)稀釋的度的測(cè)定;蚪MDNA在50ng-5pg之間選擇,質(zhì)粒DNA在10^6拷貝數(shù)左右選擇。
2.3 PCR抑制子:通常用于消除抑制子的辦法是將樣本進(jìn)行稀釋?zhuān)窃谀承l件下,抑制子的濃度高,而模板量少,稀釋法就不再能達(dá)到好的效果,反會(huì)使反應(yīng)的敏感度降低,所以,研究者若要進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR研究,最好選用純化的模板。
2.4 引物的濃度:引物的濃度是一個(gè)影響PCR反應(yīng)的關(guān)鍵因素,其濃度太低,會(huì)致使反應(yīng)不完全,若引物太多,則發(fā)生錯(cuò)配以及產(chǎn)生非特異的產(chǎn)物的可能性會(huì)大大增加。對(duì)于大多數(shù)PCR反應(yīng),0.5uM是個(gè)合適的濃度,若初次選用這個(gè)濃度不理想,可在0.3-1.0uM之間進(jìn)行選擇,直至達(dá)到滿(mǎn)意的結(jié)果。
2.6 退火溫度:首次實(shí)驗(yàn)設(shè)置的退火溫度應(yīng)比計(jì)算得出的Tm值小5℃,然后在1-2℃內(nèi)進(jìn)行選擇。一般地,退火溫度要根據(jù)經(jīng)驗(yàn)來(lái)確定,這個(gè)經(jīng)驗(yàn)值往往會(huì)同計(jì)算得到的Tm值有較大的差距。
3. 用SYBR Green I進(jìn)行一步法RT-PCR的條件優(yōu)化:
3.1 MgCl2的濃度:不同的靶分子選用不同的濃度,通常是在4-8mM之間選擇。
3.2模板的濃度:RT-PCR實(shí)驗(yàn)既可以選用總RNA,又可以選用mRNA,其濃度應(yīng)在1pg-1ug之間選擇。對(duì)于低模板濃度,可以增加適量的MS2或用alternative RNA 作為載體進(jìn)行測(cè)定。
3.3對(duì)照設(shè)置:每一引物都應(yīng)設(shè)有陰性對(duì)照,陽(yáng)性對(duì)照和污染對(duì)照。
4. 雜交探針測(cè)定DNA
4.1 MgCl2的濃度:在2-4mM的基礎(chǔ)上加0.5-1.0mM,但是不要超過(guò)2.0mM。
4.2雜交探針的濃度:初次實(shí)驗(yàn)每個(gè)探針用0.2uM,如果信號(hào)強(qiáng)度達(dá)不到要求,可以增加至0.4uM。
4.3對(duì)照設(shè)置:每一引物都要設(shè)陰性對(duì)照,每一探針都要設(shè)陰性對(duì)照。每次實(shí)驗(yàn)都要設(shè)陽(yáng)性對(duì)照。
4.4 其它的條件同SYBR Green I。
5 用雜交探針實(shí)時(shí)定量RT-PCR:
5.1 MgCl2的濃度:在4-8mM之間進(jìn)行選擇。
5.2雜交探針的濃度:初實(shí)驗(yàn)用0.2 uM,如果熒光信號(hào)強(qiáng)度不足,可以增加至0.4uM。
5.3模板濃度設(shè)置:優(yōu)化的擴(kuò)增須進(jìn)行一系列知釋度的實(shí)驗(yàn),在條件有困難的條件下,至少要進(jìn)行兩個(gè)稀釋度的測(cè)定。選用1pg-1ug的總RNA或是mRNA,若是模板的濃度過(guò)。ㄐ∮10ng/ul),則可加入MS2或alternative RNA作為載體。
5.4 對(duì)照設(shè)置:每個(gè)引物都要設(shè)無(wú)模板對(duì)照,陽(yáng)性對(duì)照以及污染對(duì)照。
6.關(guān)于雜交探針的評(píng)價(jià):在使用雜交探針進(jìn)行實(shí)驗(yàn)時(shí),必須注意防止探針-引物二聚體的形成和其本身在反應(yīng)過(guò)程中的延伸。引物-探針二聚體的形成,主要是因?yàn)樘结樋膳c引物的3’末端雜交,其形成以后,會(huì)致使此二聚體擴(kuò)增,從而同目的基因競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)的原料,致反應(yīng)的效率下降。探針其本身能同目的基因相結(jié)合,且其解鏈溫度高于引物,所以它可能作為引物而引發(fā)延伸反應(yīng),為了防止發(fā)生這種現(xiàn)象,通常是將其3’末端完全磷酸化,使之不能延伸,若此磷酸化不完全或是沒(méi)有磷酸化,就會(huì)產(chǎn)生目的基因的副產(chǎn)品,從而干擾實(shí)驗(yàn)結(jié)果。鑒于以上這兩點(diǎn),所以應(yīng)對(duì)探針精心設(shè)計(jì),并將其末端完全磷酸化。
目前的實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)進(jìn)展迅速,本文是結(jié)合本實(shí)驗(yàn)室的工作經(jīng)驗(yàn)以及文獻(xiàn)資料寫(xiě)成的,文中提到的一系列方案、實(shí)驗(yàn)材料和儀器設(shè)備都有其各自的優(yōu)缺點(diǎn),也有各自的使用范圍,不能一概而論。所以不論研究者想進(jìn)行何種研究,都應(yīng)根據(jù)自己的情況首先找到適合自己研究目的的條件,本文僅供有意于運(yùn)用實(shí)時(shí)定量PCR進(jìn)行研究的人員參考
 

 

 
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