最常用的將克隆重組的DNA片段導(dǎo)入哺乳動物細胞的方法是用磷酸鈣介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染的DNA可能是通過吞飲作用進入細胞質(zhì)，然后進行細胞核。

　�。�1）配制下列溶液

　�、�2×HEPES-緩沖鹽溶液（HBS）

　　②2mol/L CaCl2

　�、�0.1×TE(pH8.0)用0.22μm濾器過濾除菌，分裝貯存于4℃。

　�、蹹NA：將DNA（約20μg/106細胞）溶于0.1×TE（pH8.0），使用濃度為40μg/ml。為使轉(zhuǎn)化效率達到最高，質(zhì)粒DNA應(yīng)用CsCl-溴化乙錠密度梯度平衡離心法純化。如果所用DNA量較少，應(yīng)加入載體DNA將DNA濃度調(diào)至40μg/ml。實驗室制備的真核載體DNA轉(zhuǎn)染效率通常要比商品化的牛胸腺DNA、鮭魚精DNA高。載體DNA用前應(yīng)通過乙醇沉淀或氯仿抽提進行滅菌。

　　（2）轉(zhuǎn)染前24h用胰蛋白酶進行消化以獲得對數(shù)生長期的細胞，以1～2×105細胞/cm2的密度重新種入60mm組織培養(yǎng)皿中。在37℃、5%～7%CO2及一定濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)20～24h。

　　（3）每轉(zhuǎn)染一個60mm培養(yǎng)皿中的單層細胞，須依如下方法制備磷酸鈣-DNA共沉淀物：取步驟一所制備的DNA[40μg/ml，溶于0.1×TE(pH8.0)]220μl,2×HBs 250μl,放入一次性使用的滅菌5ml塑料管中，緩慢加入31μl 2mol/l 氯化鈣（溫和混合30s左右）。于室溫育20～30min，其間將形成細小沉淀。溫育結(jié)束時，用吸管將混合液吹打一次，使沉淀物懸浮。

　　通常采用的另一方案是將氯化鈣和DNA的稀釋混合液加入2×HBS溶液中，逐滴加入并小心混合250μl按步驟一制備并溶于氯化鈣（250mmol/L）的DNA。按照前述方法溫育之。

　　如果需要轉(zhuǎn)染更為大量的細胞，上述兩種反應(yīng)混合液的體積均可翻一番或翻兩番。如果體積翻兩番，則須使用更大的塑料管，一般在25cm2細胞培養(yǎng)瓶或60mm細胞培養(yǎng)皿上，可將0.5ml磷酸鈣-DNA共沉淀物加入5ml培養(yǎng)液中，而在90mm細胞培養(yǎng)皿上，一般將1ml沉淀物加入10ml培養(yǎng)液中。

　　已經(jīng)發(fā)表的方案中，混合各組分的方式與速率大不相同。其中有一些認為除了溫和振搖之外，其它措施均無濟于事，并建議用電動移液裝置吹出的空氣來混合溶液。其它一些方案則規(guī)勸在加入DNA溶液時連續(xù)而緩慢地混勻，然后再溫和振蕩。其目的是為了避免急速形成粗沉淀物，以致降低轉(zhuǎn)化效率。實際上，除了混合的速度之外，還有其它若干因素包括DNA的濃度和大�。ㄗ尭叻肿恿緿NA從細針頭中通過，可將之剪切變�。�、緩沖液的精確pH（有些工作者配制了幾批pH范圍從6.95至7.1不等的HBS緩沖液，逐批試驗沉淀物的質(zhì)量及轉(zhuǎn)染效率）。如果必須使轉(zhuǎn)染效率達到最高，就要花時間針對特定的系統(tǒng)優(yōu)化上述幾種因素。一旦得到一批靈驗的試劑，只需依照前面方法進行配制和貯存，即可在長期內(nèi)獲得可重復(fù)的結(jié)果。

　�。�4）將磷酸鈣-DNA懸液轉(zhuǎn)移至細胞單層上的培養(yǎng)液中[在60mm培養(yǎng)皿中，可將0.5ml懸液加入5ml培養(yǎng)液中]，輕輕左右晃動一下培養(yǎng)皿使培養(yǎng)液得以混合，此時可見培養(yǎng)液成黃橙色渾濁狀。另一方法是吸出培養(yǎng)液，直接把沉淀物加到細胞上，將細胞置于室溫溫育15min，然后再將培養(yǎng)液加回到培養(yǎng)皿中，此時細胞上有許多細小顆粒。采用以上兩種方法，都要在37℃、5%～7%CO2及一定濕度的培養(yǎng)箱中將轉(zhuǎn)染細胞培養(yǎng)長達24h[時間的長短取決于后續(xù)處理步驟的不同，見步驟（5）]。

　�。�5）然后，轉(zhuǎn)染細胞可依以下任一種方法處理：

　�、偃绻�不進行其它處理（如用氯喹、甘油或丁酸鈉等試劑處理，見后），可在細胞培養(yǎng)16～24h后，吸出培養(yǎng)液和沉淀物，用PBS將單層細胞再洗一次。然后按下述③d操作。

　�、谠谠S多情況下，同時用氯喹處理細胞，可提高DNA攝入率。氯喹可能是通過抑制溶酶體水解酶類對DNA的降解而起作用的。氯喹濃度及其處理時間不能超越細胞對其毒性作用的耐受能力。因此必須通過預(yù)實驗來決定適于所用特定型別細胞的最佳氯喹濃度。但對于大部分型別的細胞，用終濃度為100μmol/L的氯喹處理3～5h，都可取得良好效果�？稍诹姿徕}-DNA共沉淀物加入細胞之前或之后（見步驟（4）介紹的其它方法），直接將氯喹二磷酸貯存液（過濾除菌并貯于-20℃用金屬泊密封的管中，100mmol/L）稀釋（1：100）于培養(yǎng)液中。在氯喹處理過程中，細胞呈現(xiàn)泡狀是正常的。經(jīng)用DNA和氯喹處理3～5h后，棄去培養(yǎng)液和沉淀，用PBS洗，然后按下述d操作。

　�、塾酶视投虝禾幚砑毎�，同樣可提高轉(zhuǎn)化效率或?qū)�入DNA的瞬時表達水平。這一步驟可以在氯喹處理之后進行。由于不同細胞對甘油的毒性作用的敏感性相差懸殊，因此每種型別的細胞都必須通過預(yù)實驗決定最佳處理時間（從30s至3min）。耐受甘油的細胞可以暴露于含磷酸鈣-DNA共沉淀物（含或不含氯喹）的生長液3～5h后進行休克。

　　a. 吸出生長液，用PBS將單層細胞洗1次；

　　b.在單層細胞中加入1.5ml溶于1×HBS的15%甘油，在37℃培養(yǎng)0.5～3min；

　　c.吸出甘油，用PBS將單層細胞洗1次；

　　d.加入5ml預(yù)加溫的完全生長液，放入培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)24～60h后，檢測DNA的瞬時表達或?qū)⒓毎�重新種入適當(dāng)?shù)倪x擇性培養(yǎng)基中，分離穩(wěn)定的轉(zhuǎn)化體。

　�、軜I(yè)以表明，丁酸鈉也可以在猴源和人源細胞中增強帶SV40早期啟動子/增強子的重組質(zhì)粒的表達�？芍苯釉谏�長液中加入有關(guān)試劑，也可以使經(jīng)過甘油休克的細胞接受丁酸鈉處理。須視細胞型別的不同，采用不同濃度的丁酸鈉（500mmol/L貯存液，在化學(xué)通風(fēng)櫥中用NaOH中和丁酸制備而成），例如：

CV-1　　　　10mmol/L

NIH-3T3　　 7mmol/L

HelaS3　　　5mmol/L

CHO 　　　　2mmol/L

　　不加完全生長液，然后重復(fù)步驟d。

　　（6）轉(zhuǎn)移基因表達和細胞集落形成

　�、偎矔r表達：在轉(zhuǎn)染后48～60h收獲細胞，進行RNA或DNA雜交分析。新合成的蛋白質(zhì)可以用放射免疫測定Western印跡，體內(nèi)代謝標記－免疫沉淀或者細胞提取液中酶活性的測定等方法來進行分析，如果測定中有重復(fù)品或者轉(zhuǎn)染細胞要經(jīng)過多種不同條件或在一段時間歷程以內(nèi)取不同時間進行處理，就要避免皿與培養(yǎng)皿之間轉(zhuǎn)染效率的偏差。在這些情況下，最好轉(zhuǎn)染大片的單層細胞（90mm培養(yǎng)皿），培養(yǎng)24h后用胰蛋白酶進行消化，再分接到若干較小的培養(yǎng)皿上。

　�、诜�(wěn)定轉(zhuǎn)化：在非選擇性培養(yǎng)基中培養(yǎng)18～24h，使所轉(zhuǎn)移基因得到表達之后，用胰蛋白酶消化細胞，種入適當(dāng)?shù)倪x擇性培養(yǎng)基中。這種培養(yǎng)基在2～3周內(nèi)每2～4d須更換1次，以便除去死細胞殘骸并使抗性細胞集落得以生長。

　　可以克隆單個細胞集落，增殖后進行測定。可以用冰預(yù)冷的甲醇將仍保留在培養(yǎng)皿內(nèi)的細胞固定15min，再于室溫用10%Giemsa染色15min，最后用自來水沖洗，這樣即可得到細胞集落數(shù)的永久記錄。Giemsa染液可用PBS或水現(xiàn)用現(xiàn)配，并用Whatman 1號濾紙過濾。

　　重新接種細胞以便取得分隔良好的細胞集落所要求稀釋倍數(shù)，主要由穩(wěn)定轉(zhuǎn)化的效率來決定。這一效率可以相差若干個數(shù)量級，它起決于：a.受體細胞的型別（即使同一細胞系，克隆不同或傳代數(shù)不同，也表現(xiàn)出顯著差異）；b.導(dǎo)入基因的特性及其轉(zhuǎn)錄調(diào)控信號強弱；c.轉(zhuǎn)染中所用供體DNA的量。