�。�1）組織準(zhǔn)備：大鼠以10%水合氯醛（0.3ml/100g 體重），或1%戊巴比妥鈉約1ml（3～4mg/100g體重）腹腔內(nèi)注射麻醉，用100ml生理鹽水沖洗和150ml 4%多聚甲醛主動(dòng)脈灌注固定。固定半小時(shí)后?〕鱟櫓?椋?萌?%多聚甲醛液中后固定4～6h，4℃。
如要取腦組織，可于灌注后置4℃冰箱內(nèi)過夜，次晨取腦組織，后固定4℃4h左右。
�。�2）組織切片/培養(yǎng)細(xì)胞在經(jīng)過處理，抹以粘附劑的載片上，在43℃烤箱過夜。
�。�3）在PBS（0.1mol/l Ph7.2）中浸5～10min。
�。�4）浸于0.1mol/L甘氨酸—PBs 液內(nèi)5min。
�。�5）為增強(qiáng)組織通透性，將載片置于0.3%Triton X-100(在PBS內(nèi))10～15min。
（6）PBS洗3×5min。
（7）在蛋白激酶K（1μg/ml）溶于Tris –HCl (0.1mol/L, pH8.0)和EDTA（50mmol/L,pH8）中37℃20min。也有用蛋白激酶K溶液，不加EDTA的。
（8）浸入新鮮配制的4%多聚甲醛（在PBS0.1mokl/L,pH7.2）3min以終止消化作用和再固定。
（9）浸入新鮮配制的含0.25%（V/V）三乙醇胺（0.1mol/l pH8.0）中，10min以達(dá)乙�；╝cetylate）的目的。
�。�10）預(yù)雜交：在50%（V/V）甲酰胺溶于4×SSC預(yù)熱37℃15～45min 。
�。�11）雜交：將載片上過量的甲酰胺液傾去，加20μl雜交混合液（含放射性同位素標(biāo)記的探針量為5×103～106cpm/每張載片）。覆以硅化的蓋玻片，置于盛有少量5×SSC的硬塑料盒內(nèi)以保持濕度，42℃孵育12～18h。為使載片不致于浸泡于SSC溶液內(nèi)，通常以二根玻管（或棒）扎成擔(dān)架狀，載片置于玻棒上，與鹽液不接觸，但可保持盒內(nèi)空氣濕潤(rùn)。
（12）雜交后漂洗
�、僖孕⑦m量4×SSC溶液，將載片一端斜插入溶液內(nèi)，輕輕抖動(dòng)以移除蓋玻片。
�、趯⑤d片置于有刻度的染色用小方玻缸內(nèi)，加入42℃（預(yù)熱）4×SSC，3×20min。在漂洗過程中宜不斷振動(dòng)，以增強(qiáng)漂洗效果。如設(shè)有調(diào)整鈕的振動(dòng)臺(tái)更為理想。
�、奂�20μlRNA酶溶液（20μg/ml）在NaCl(0.5mol/L)、Tris –HCl (pH8.0)和EDTA（1mmol/L,pH8.0）消化未雜交探針，42℃30min（也有不加EDTA的）。
�、芤赃f減梯度鹽溶液SSC漂洗載片：2×SSC，0.1×SSC和0.05×SSC各30min 42℃。
⑤梯度酒精脫水：70%，90%，2×100%酒精含0.3mol/L乙酰胺，室溫，每次10min，空氣干燥后待進(jìn)行放射自顯影。
�。�13）放射自顯影和復(fù)染
①在暗室中預(yù)熱水浴至45℃，將分裝的核乳膠溶液小瓶置水浴中浸泡至少1h，同時(shí)預(yù)熱一電熱板至45℃。將雜交后漂洗過完全干燥的載片依次排列于玻片架上，有組織切片一面面向?qū)嶒?yàn)者。在實(shí)驗(yàn)的載玻片前放1～2張無切片的干凈玻片，作為測(cè)定核乳膠溶解度與浸片高度等的空白對(duì)照片。浸泡（Dipping）過核乳膠膜的載片放入暗盒內(nèi)，事先最好將暗盒準(zhǔn)備好，為保持干燥，放入一包變色硅膠干燥劑（無水干燥劑為小塊藍(lán)色晶體，吸水后呈粉紅色，置烤箱中烘干待轉(zhuǎn)成藍(lán)色后可重復(fù)應(yīng)用），預(yù)先備好封固暗盒用的膠帶備用。
�、诤巳槟z液，國(guó)外產(chǎn)品為ILFord K5乳膠液，國(guó)內(nèi)核乳膠產(chǎn)品可自原子能研究所訂購(gòu)。不論國(guó)產(chǎn)或進(jìn)口乳膠，事先應(yīng)（按說明需要濃度）稀釋分裝在10ml小瓶?jī)?nèi)，密封于暗盒內(nèi)，4℃?zhèn)溆�。反�?fù)的冷凍和融解核乳膠會(huì)增加背景染色。每一小瓶供一次性實(shí)驗(yàn)應(yīng)用。
為節(jié)省核乳膠，切片宜貼附在靠近載片的一端。這樣，在浸泡時(shí)少量乳膠便可充分覆蓋切片。
�、劢巳槟z（Dipping）：當(dāng)一切準(zhǔn)備工作就緒后，在暗室中（只留完全燈）先將載片置于電熱板上預(yù)熱1～2min。以空白載片浸入核乳膠液，取出后檢查核乳膠是否充分溶解，玻片上有無氣泡。然后正式進(jìn)行切片浸入。浸核乳膠膜是一項(xiàng)需反復(fù)操練的技術(shù)。以拇、食指夾住玻片一端，以垂直方向進(jìn)入乳膠，進(jìn)入的提出均應(yīng)采取中速度，且速度應(yīng)保持穩(wěn)定，提出后可將玻片一端滴下的乳膠輕沾于吸水紙上，掌握好該技術(shù)，浸入形成的核乳膠膜厚度適當(dāng)，均勻一致。依序放在預(yù)熱45℃的電熱板，傾斜度應(yīng)一致。在45℃電熱板上干燥至少1～2h，在此期間應(yīng)嚴(yán)格控制在黑暗中。
�、苎b入暗盒曝光：將載片架上已干燥覆有核乳膠的載片放入暗盒內(nèi)，周圍用膠帶封固，以標(biāo)簽寫明：樣品種類，實(shí)驗(yàn)者姓名，曝光日期等放在4℃冷房或冰箱內(nèi)。曝光時(shí)間依同位素種類而異，32P大約需5～7日，3H需4周，但還要參考細(xì)胞內(nèi)mRNA的含量而定，含量高者曝光時(shí)間宜短，反之宜適當(dāng)延長(zhǎng)�？筛鶕�(jù)不同曝光時(shí)間的實(shí)驗(yàn)結(jié)果予以調(diào)整。曝光時(shí)間長(zhǎng)可增加信號(hào)，但也增加背景，反之，信號(hào)減弱，但背景亦低。
⑤顯影：取出切片中暗盒（注意：切勿啟封），放在室溫至少1h，使其回升到室溫。然后在暗室內(nèi)（只留安全燈），將載片置入Kodax D19顯影液（預(yù)調(diào)溫至18～20℃）3min。水沖片刻后入Kodax F24固定劑內(nèi)3min。上述溶液及水溫最好都保持在18～20℃。突然改變?nèi)芤簻囟葧?huì)損壞精細(xì)的核乳膠膜。另外，在顯影和定影過程中不要振蕩溶液，因?yàn)�，這時(shí)的乳膠還是處于膠狀結(jié)構(gòu)，溶液振蕩的沖擊可使乳膠膜產(chǎn)生劃痕。
⑥沖洗，脫水和復(fù)染：用自來水（水沖力勿過猛）沖洗載片20min，如需要可用1%蘇木精復(fù)染，復(fù)染后自來水沖洗分化2min，梯度酒精脫水（70%，90%，100%）每次3min，二甲苯透明，DPX封片。