摘 要:從鱈魚(yú)表皮和內(nèi)臟的混合菌群中分離純化出能夠穩(wěn)定代謝氧化三甲胺(TMAO)的腐敗希瓦氏菌(Shewanella putrefaciens)Y0612。使用非抑制性離子色譜對(duì)腐敗希瓦氏菌代謝TMAO 的能力進(jìn)行了分析,研究菌株對(duì)TMAO 的代謝規(guī)律。確定Y0612 對(duì)TMAO 的還原沒(méi)有受氧氣的抑制,在有氧條件下比厭氧條件下對(duì)TMAO 還原效果更好;溫度為15~35℃之間TMAO 的代謝率隨著溫度升高而略有升高。在水產(chǎn)品的加工中,通過(guò)SSOP 保持衛(wèi)生的操作,減少與氧氣的接觸,對(duì)環(huán)境溫度進(jìn)行控制, 對(duì)于該菌均有一定的抑制作用,減少水產(chǎn)品的腐敗。
氧化三甲胺 (trimethylamine-N-oxide,TMAO) 分子式為 (CH3)3NO,廣泛分布于海產(chǎn)硬骨魚(yú)類(lèi)的肌肉中[1],是許多海洋魚(yú)類(lèi)的肌肉中非蛋白氮的重要組成部分,具有特殊的鮮味[2]。在貯藏及運(yùn)輸過(guò)程中,TMAO 在環(huán)境微生物和水產(chǎn)品自身內(nèi)源性酶的作用下[3],降解產(chǎn)生三甲胺(TMA),進(jìn)而生成二甲胺(DMA)和甲醛(FA)等[4]。
1.1.3 培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨5,酵母膏1,NaCl 15,F(xiàn)eCl3 0.01, pH7.2~7.5,121℃滅菌20min;TMAO 經(jīng)0.22μm 濾膜過(guò)濾后按2.0 mg/ml 的終濃度添加。Biolog 培養(yǎng)基成分參照謝家儀[17]。
超凈臺(tái)上,取鱈魚(yú)表皮和內(nèi)臟適量,經(jīng)無(wú)菌研缽研磨后, 置于含100ml 無(wú)菌生理鹽水的三角瓶?jī)?nèi),170r/min,25℃振蕩培養(yǎng)1h。取10ml 上述菌體原液,接種到含有100ml 富集培養(yǎng)基的錐形瓶中,170r/min,25℃振蕩培養(yǎng)24h。梯度稀釋上述培養(yǎng)液,涂布平板后,在適宜條件下培養(yǎng)24h,依據(jù)平板的菌落數(shù),選恰當(dāng)稀釋度且生長(zhǎng)狀況良好的菌為對(duì)象,進(jìn)行菌種的分離。選取不同特性的菌落,進(jìn)行多次反復(fù)的劃線培養(yǎng),直至菌種純化。
取菌株種子液5ml 接種到250ml 三角瓶中,瓶?jī)?nèi)添加100ml 含TMAO 2.0 mg/ml 的2216E 培養(yǎng)基,分別采用170r/ min 振蕩培養(yǎng)和靜置培養(yǎng)的方法分析有氧和厭氧條件下細(xì)菌的代謝能力,培養(yǎng)溫度25℃,每隔2h 取樣一次,按照1.2.2 方法進(jìn)行檢測(cè);同時(shí)用分光光度計(jì)在660nm 處測(cè)吸光值,作為菌株生物量測(cè)定的參考值。
取Y0612 種子液5ml 接種到100ml 含TMAO 2.0 mg/ ml 的培養(yǎng)基中,分別于15℃、25℃、35℃,170r/min,振蕩培養(yǎng)24h,每隔一定時(shí)間取樣,按照1.2.2 方法進(jìn)行檢測(cè);同時(shí)測(cè)定菌液660nm 的吸光值。
根據(jù)菌株代謝TMAO 的離子色譜分析結(jié)果,做出發(fā)酵24h 時(shí)TMA 與TMAO 的含量變化曲線,如圖1 所示。
發(fā)酵進(jìn)行4h 時(shí),非抑制型離子色譜檢測(cè)到了TMA 的產(chǎn)生, 進(jìn)行24h 時(shí)TMAO 含量已產(chǎn)生較大幅度的下降,降解率相當(dāng)于初始含量的70%。
對(duì)腐敗希瓦氏菌在15℃、25℃、35℃條件下培養(yǎng)24h 后, 對(duì)發(fā)酵液中細(xì)菌生物量和TMAO、TMA 含量的檢測(cè)結(jié)果分別如圖4 和圖5 所示。溫度為15℃ ~35℃之間TMAO 的代謝率基本上隨著溫度升高而略有升高。
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腐敗希瓦氏菌導(dǎo)致水產(chǎn)品腐敗的原因探析.pdf